干货丨 一文详解SGAT单基因关联分析工具(三)

简介: 干货丨 一文详解SGAT单基因关联分析工具(三)

显著SNP位点提取与转化

根据GWAS得到的Rresult文件信息,能够找出每个snp位点对应的显著性情况和基因变异信息,接下来,需要根据表格中的信息进行归纳总结,对不同显著性层次进行区分,找出可能性最大的点,过程比较繁琐。

这里笔者分享一个算法,使统计SNP和变异类型变的更加简便快捷,主要基于R语言的tidyverse完成。


主要步骤与思路解析

  • 加载R包与环境,表型和基因列表文件
  • 定义变异信息转换函数
  • 创建输出数据框,包括基因和注释信息
  • 迭代筛选符合要求的SNP
  • 按照多个层次依次统计显著情况
  • 结果合并与注释

操作步骤

加载R包

library(tidyverse)
library(writexl)
library(xlsx)

读取输入文件

list_phe <- read.table("./01_scripts/list_phe.txt",header = F)
# list_gene <- read.table("./01_scripts/list_gene.txt",header = F)
list_gene <- read.table("./17_GWAS_SNP_varient_find/gene.id",header = F)
varient_db <- read.table("./01_scripts/function/varient_name.txt",sep = "\t",header = F)

主要依赖三个文件,phe为变形列表,需要与GWAS结果的phe一致,gene为基因ID列表,varient_db是变异类型注释库,包含一一对应的变异信息。

变异信息转换

# 定义一个转换变异的函数
varient_name <- function(x){
      if (x %in% varient_db$V1){
            for (i in 1:nrow(varient_db)){
                  if (varient_db$V1[i]==x){
                        return(varient_db$V2[i])
                  }
            } 
      }else{
            return(x)
      }
}

这里定义一个函数,对输入的变异类型自动查找匹配的注释信息,若出现不存在于已有的变异类型,则返回原始值,后续结果中方便检查和校正。

创建输出数据框

out <- list_gene
colnames(out) <- "gene"
out$additon <- NA

在计算开始前,创建一个空数据框,用于迭代过程中添加信息,提前分配储存空间,其中第一列为基因ID,第二列为注释。

迭代筛选算法

下面我提供了两种思路,方法一是先对每个表型下的所有snp进行判断,如果存在大于阈值的显著位点则备注,反之舍弃。

方法二是先找出单个SNP,然后再判断该位点处有多少个表型符合要求,如果存在多个表型均显著,则将其归纳统计到一起。

for (job in list_gene$V1){
      print(job)
      df <- read.xlsx(paste0("./16_out_GWAS_and_T/",job,"_all.xlsx"),sheetIndex = 1)
      # 法一:寻找每个表型下的SNP
      # 7  9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 为待提取的值
      # for (i in seq(7,29,2)){ 
      #       phe <- colnames(df)[i]
      #       df_p7_snp <- df %>% arrange(!!sym(phe)) %>% filter(!!sym(phe)>7)
      #       df_p3_snp <- df %>% arrange(!!sym(phe)) %>% filter(!!sym(phe)>3) %>% filter(!!sym(phe)<7)
      #       # P值大于7
      #       var_en <- df_p7_snp$T_eff[1] %>% str_split("[,]") %>% str_split("[|]")
      #       var_en <- var_en[[1]][2]
      #       var_cn <- varient_name(var_en)
      # }
      # 法二:寻找每个snp下符合的表型
      find <- matrix(ncol = 4,nrow = 0)
      colnames(find) <- c("snp","var","p","phe")
      for (i in 1:nrow(df)){
            snp_name <- df$SNP[i]
            if (is.na(df$T_eff[i])){next}
            snp_var_en <- df$T_eff[i] %>% str_split("[,]")
            snp_var_en <- snp_var_en[[1]][1] %>% str_split("[|]")
            if (substr(snp_var_en,4,22)!=job){next}
            snp_var_en <- snp_var_en[[1]][2]
            snp_var_en <- varient_name(snp_var_en)
            snp_phe_p <- df[i,c(seq(7,29,2))]
            find_phe <- c()
            for (i in 1:ncol(snp_phe_p)){
                  if (snp_phe_p[1,i]>7){
                        find_phe <- c(find_phe,colnames(snp_phe_p)[i])
                  }
            }
            find_snp <- c(snp_name,snp_var_en,"[P>7]",paste0(find_phe,collapse = "+"))
            if (find_snp[4]!=""){
                  find <- rbind(find,find_snp)
            }
      }
      if (nrow(find) == 0){
      find <- matrix(ncol = 4,nrow = 0)
      colnames(find) <- c("snp","var","p","phe")
      for (i in 1:nrow(df)){
            snp_name <- df$SNP[i]
            if (is.na(df$T_eff[i])){next}
            snp_var_en <- df$T_eff[i] %>% str_split("[,]")
            snp_var_en <- snp_var_en[[1]][1] %>% str_split("[|]")
            if (substr(snp_var_en,4,22)!=job){next}
            snp_var_en <- snp_var_en[[1]][2]
            snp_var_en <- varient_name(snp_var_en)
            snp_phe_p <- df[i,c(seq(7,29,2))] 
            find_phe <- c()
            for (i in 1:ncol(snp_phe_p)){
                  if (snp_phe_p[1,i]>5){
                        find_phe <- c(find_phe,colnames(snp_phe_p)[i])
                  }
            }
            find_snp <- c(snp_name,snp_var_en,"[P>5]",paste0(find_phe,collapse = "+"))
            if (find_snp[4]!=""){
                  find <- rbind(find,find_snp)
            }
         }
      }
      if (nrow(find) == 0){
            find <- matrix(ncol = 4,nrow = 0)
            colnames(find) <- c("snp","var","p","phe")
            for (i in 1:nrow(df)){
                  snp_name <- df$SNP[i]
                  if (is.na(df$T_eff[i])){next}
                  snp_var_en <- df$T_eff[i] %>% str_split("[,]")
                  snp_var_en <- snp_var_en[[1]][1] %>% str_split("[|]")
                  if (substr(snp_var_en,4,22)!=job){next}
                  snp_var_en <- snp_var_en[[1]][2]
                  snp_var_en <- varient_name(snp_var_en)
                  snp_phe_p <- df[i,c(seq(7,29,2))] 
                  find_phe <- c()
                  for (i in 1:ncol(snp_phe_p)){
                        if (snp_phe_p[1,i]>3){ 
                              find_phe <- c(find_phe,colnames(snp_phe_p)[i])
                        }
                  }
                  find_snp <- c(snp_name,snp_var_en,"[P>3]",paste0(find_phe,collapse = "+"))
                  if (find_snp[4]!=""){
                        find <- rbind(find,find_snp)
                  }
            }
      }
      var_info <- c()
      out_info <- c()
      if (nrow(find)==0){
            out_info <- "GAPIT:log10.P < 3"
      }else{
            for (i in 1:nrow(find)){
                  var_info <- c(var_info,find[i,2],find[i,1],find[i,3],paste0("(",find[i,4],"),"))
            }
            out_info <- paste0(nrow(find),"个-GAPIT分析",paste0(var_info,collapse =""))
            out_info <- substr(out_info,1,nchar(out_info)-1)
      }
      for (i in 1:nrow(out)){
            if (identical(out$gene[i],job)){
                  out$additon[i] <- out_info
                  break
            }
      }
}

上述算法的核心是先从基因列表中取一个基因,然后找这个基因对应的snp和表型,如果找到某些snp在多个表型中显著性都大于7,则将其添加到注释信息,但是如果没有大于7的位点,则开始继续寻找是否存在大于5的位点,以此类推,若也没有大于5的点,则寻找大于3的位点。

该过程将显著区间分为三层,只有上层个数为零时,才会启动下一层的搜索,因此保证了每次结果的显著性差异保持在相对较平均的范围中,防止过大过小的位点同时选中。

结果保存

write.xlsx(out,
    "./17_GWAS_SNP_varient_find/gene_infomation.xlsx",
    sheetName = "varient",
    row.names = F,col.names = T)

结果文件保存在out变量中,将其输出为excel即可,如有其它想法可以根据out再进行深入分析,本文不做延伸。

本项目测试运行环境

  • centos7 linux
  • R4.2.3

参考资料:

Plink、Tassel、LDBlockshow、GAPIT、Tidyverse、vcfR、ape、do、multtest、LDheatmap、genetics、scatterplot3d、EMMREML等

声明

SGAT遵循国际GNU General Public License v3.0,核心算法和代码均开源公布,进行科学研究学习交流,不涉及商业使用,如果有任何问题欢迎联系。

软件公开发布链接:

doi.org/10.5281/zenodo.7783891


感谢您能看到这里,觉得有趣欢迎转发~

END

© 素材来源于网络,侵权请联系后台删除

笔记合集,点击直达

相关文章
Vue3 复制 copy 功能实现(vue-clipboard3)
Vue3 复制 copy 功能实现(vue-clipboard3)
2384 0
|
存储 算法 Java
Arraylist 在 Java 中能容纳多少个元素?
【8月更文挑战第23天】
593 0
|
人工智能 数据可视化
用了这8款AI制作PPT软件,年终总结再也不是问题!
8款好用的AI生成PPT软件推荐,轻松解决你的年终总结!
|
机器学习/深度学习 人工智能 算法
机器学习算法的优化与改进:提升模型性能的策略与方法
机器学习算法的优化与改进:提升模型性能的策略与方法
2687 13
机器学习算法的优化与改进:提升模型性能的策略与方法
|
SQL 关系型数据库 MySQL
MySQL AUTO_INCREMENT 原理解析
在关系型数据库MySQL中,AUTO_INCREMENT是数据库的一个属性,该属性使得在申明了AUTO_INCREMENT的列中可以自动生成唯一的递增值。本文详细介绍了在InnoDB及MyISAM引擎中AUTO_INCREMENT的使用原理及一些容易被忽略的问题。
1440 0
|
JavaScript 前端开发 调度
事件驱动模型
【10月更文挑战第7天】事件驱动模型
904 7
|
存储 网络架构
Next.js 实战 (四):i18n 国际化的最优方案实践
这篇文章介绍了Next.js国际化方案,作者对比了网上常见的方案并提出了自己的需求:不破坏应用程序的目录结构和路由。文章推荐使用next-intl库来实现国际化,并提供了详细的安装步骤和代码示例。作者实现了国际化切换时不改变路由,并把当前语言的key存储到浏览器cookie中,使得刷新浏览器后语言不会失效。最后,文章总结了这种国际化方案的优势,并提供Github仓库链接供读者参考。
1251 0
Next.js 实战 (四):i18n 国际化的最优方案实践
|
Web App开发 Android开发
FFmpeg开发笔记(四十六)利用SRT协议构建手机APP的直播Demo
实时数据传输在互联网中至关重要,不仅支持即时通讯如QQ、微信的文字与图片传输,还包括音视频通信。一对一通信常采用WebRTC技术,如《Android Studio开发实战》中的App集成示例;而一对多的在线直播则需部署独立的流媒体服务器,使用如SRT等协议。SRT因其优越的直播质量正逐渐成为主流。本文档概述了SRT协议的使用,包括通过OBS Studio和SRT Streamer进行SRT直播推流的方法,并展示了推流与拉流的成功实例。更多细节参见《FFmpeg开发实战》一书。
1445 1
FFmpeg开发笔记(四十六)利用SRT协议构建手机APP的直播Demo
|
运维 监控 Java
在Linux中,当遇到系统卡顿时,你会采取哪些步骤来定位原因?
在Linux中,当遇到系统卡顿时,你会采取哪些步骤来定位原因?
|
安全 网络安全 数据安全/隐私保护
CTF竞赛:一场网络安全技术的盛宴
CTF竞赛:一场网络安全技术的盛宴
860 0

热门文章

最新文章